碳青霉烯类耐药肠杆菌目感染的实验室诊断和防治专家共识(2026版)
**原文标题**: 碳青霉烯类耐药肠杆菌目感染的实验室诊断和防治专家共识(2026版)
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中华医学杂志 2026 年5 月26 日第 106 卷第 19 期 Natl Med J China, May 26, 2026, Vol. 106, No. 19
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碳青霉烯类耐药肠杆菌目感染的实验室
诊断和防治专家共识(2026版)
中国医疗保健国际交流促进会临床微生物学分会 中华医学会呼吸病学分会
通信作者:王辉,北京大学人民医院检验科 耐药菌传播预警和干预技术创新转化北京市
重点实验室,北京 100044,Email:whuibj@163.com;曹彬,中日友好医院呼吸与危重症
医学科,北京 100029,Email:caobin_ben@163.com
【摘要】 碳青霉烯类耐药肠杆菌目(CRE)感染对临床造成严重挑战。实际工作中,CRE 的实验
室检测和所致临床疾病的诊治及防控仍然面临诸多难题,缺乏共识和标准。为了更好地指导我国
CRE 相关的临床实践,中国医疗保健国际交流促进会临床微生物学分会和中华医学会呼吸病学分会
邀请微生物学、呼吸病学、感染病学、重症医学、药学、流行病学等领域的专家共同研讨和制订本共识,
最终形成了15 条推荐意见。本共识系统归纳了CRE 相关术语、形成机制、耐药机制、传播机制、流行
病学、实验室检测、临床诊断、治疗、感染预防和控制等内容,以期规范CRE 相关的实验室诊断和临床
防治工作。
【关键词】 碳青霉烯类耐药肠杆菌目细菌; 实验室检测; 诊断; 防治; 新型β‑内酰胺酶
抑制剂复方制剂
基金项目:国家重点研发计划(2023YFC2307100)
实践指南注册:国际实践指南注册与透明化平台(PREPARE-2026CN561)
Expert
consensus
on
microbiological
diagnosis,
prevention,
and
treatment
of
carbapenem‑resistant Enterobacterales infections (2026 edition)
Clinical Microbiology Society of China International Exchange and Promotive Association for Medical
and Health Care; Chinese Thoracic Society, Chinese Medical Association
Corresponding authors: Wang Hui, Department of Laboratory Medicine, Peking University People′s
Hospital, Beijing Key Laboratory of Innovative & Transformable Warning and Intervention
Technologies for Drug‑Resistant Pathogens, Beijing 100044, China, Email: whuibj@163.com; Cao Bin,
Department of Pulmonary and Critical Care Medicine, China‑Japan Friendship Hospital, Beijing 100029,
China, Email: caobin_ben@163.com
【】
Carbapenem‑resistant Enterobacterales;
Laboratory testing;
Diagnosis;
Prevention and treatment; Novel β‑lactam/β‑lactamase inhibitor combinations
Fund program: National Key Research and Development Program (2023YFC2307100)
Practice
guideline
registration:
Practice
Guideline
Registration
for
Transparency
(PREPARE-2026CN561)
致病微生物的耐药性是近半个世纪以来临床
医学的热点、难点、重点,其中碳青霉烯类耐药肠杆
菌目(carbapenem‑resistant Enterobacterales,CRE)
细菌尤其值得关注。从流行病学(尤其是国内检出
率呈持续、显著上升趋势)、治疗(多重耐药乃至泛
耐药)、预后(诊断不准、处置不佳等导致预后不良)
等角度看,CRE 对临床实际工作的挑战最大、威胁
最高、影响最广泛;同时,随着治疗CRE 的新药上
市,CRE的检测与诊治也面临新的挑战。业界亟需
就其药物敏感性试验(后文简称“药敏试验”)和耐
药性检测,以及临床诊断、治疗和处置、预防和控制
等方面形成共识,以优化和提升临床工作水平,有
效救治患者。现有国际指南中,部分内容与我国实
际情况存在差异(如耐药机制、酶型不同,新药不
同,进而导致用药选择有所不同);而国内相关共识
部分内容没有体现新型治疗药物等,这些原因导致
业界需要新的更适合中国实际的共识。基于此,中
国医疗保健国际交流促进会临床微生物学分会、中
华医学会呼吸病学分会因实际工作需求,联合制订
本共识,以期规范CRE 相关的实验室诊断和临床
防治工作。
一、共识制订方法
1.共识发起机构及注册:本共识由中国医疗保
健国际交流促进会临床微生物学分会、中华医学会
呼吸病学分会联合发起,启动时间为2025 年6 月。
本共识已在国际指南注册与透明化平台(http://
www. guidelines‑registry. org)注册,注册号
PREPARE‑2026CN561。
2.共识目标人群与使用者:本共识目标人群为
疑似和确诊的CRE 感染者、CRE 携带者、CRE 流行
期间相关人员(如密切接触者)。主要使用者为各
级医疗机构感染病相关临床医师、药师,临床微生
物学人员,感染控制从业人员等,可为临床诊治防
控、检测、药学等专业工作及管理、行业标准制定等
提供参考和依据。
3.共识制订工作组:本共识制订的工作小组由
微生物学、呼吸病学、感染病学、重症医学、药学、流
行病学等多学科专家共同组成。设立共识领导组、
共识制订专家组、执笔专家组、共识统筹组、共识审
校组。具体组成及主要职责如下:
(1)共识领导组
主要负责统筹安排整个共识的撰写工作,对本共识
进行整体把握。
(2)共识制订专家组由临床医学、临
床微生物学、感染控制学等相关领域专家组成。主
要职责为制订本共识的内容范围、文本结构和主要
部分,对推荐意见牵头进行审核和讨论,并确定文
本。
(3)执笔专家组按照制订专家组制订的文本结
构,分别筛选相关文献完成相应部分的推荐意见和
证据综述;对审核组反馈的建议进行修改落实。
(4)共识统筹组负责推进流程并形成记录。
(5)共识
审校组主要负责对每一次形成的文本进行审校,给
出具体建议。
4.临床问题的确定:共识领导组首先组织专家
组,按照患者、干预、对照和结局(PICO)的原则,草
拟了涵盖诊断、治疗及防控等领域的关键临床问
题。随后,工作组广泛征求了共识内多位临床医师
的修改建议。最终在综合各方反馈的基础上,经过
严谨讨论,确立了本共识的核心临床问题,以保证
指导建议的科学性与实用性。
5.证据检索和文献筛选:以“Carbapenem‑Resistant
Enterobacterale”“Carbapenem‑Resistant Gram‑negative
organism”
“Carbapenem‑Resistant Klebsiella”
“碳青霉烯
耐药的肠杆菌目”
“碳青霉烯耐药的革兰阴性杆菌”
“ 碳青霉烯耐药的克雷伯菌”为关键词,检索
PubMed、Web of Science、MedRxiv、中国知网、万方
数据知识服务平台和维普数据库,检索时间为建库
至2025 年12 月,检索不限定发表语言。进行去重
和同类文献优选等处理,并评价纳入研究的质量、
确定文献证据。
6.共识制订说明:鉴于目前本领域高质量临床
研究相对匮乏,整体证据等级偏低,尚不足以形成
规范的证据质量评价与推荐强度分级。为此,本共
识未对证据进行分级标注,相关推荐意见主要基于
现有临床证据,结合多学科专家临床经验综合形
成,并以共识度形式呈现,旨在为临床实践提供参
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考与指导。
7.推荐意见的形成过程:首先由领导组确立人
员架构,专家组拟定涵盖术语、流行病学、机制、检
测、诊断、治疗及感染控制七大核心内容的文本结
构;随后执笔组通过系统检索文献并结合临床实践
完成初稿,经审校组反馈修订后,针对第二稿与第
三稿依次开展两轮匿名德尔菲专家投票与建议征
集,最终根据反馈意见完善形成推荐意见。投票和
德尔菲调查内容主要包括针对每个共识的李克特
量表评分及可自由填写的建议区域。针对每一条
共识,采用李克特量表评分,满分7 分。7 分到1 分
分别表示:非常同意、同意、一般同意、不确定、不太
同意、不同意、完全不同意。本共识设定:针对单条
共识,评分≥6 分的专家超过70%,则该条推荐意见
达成共识。共识度=评分≥6 分的专家数量/全部投
票专家数量×100%。一共42 位专家参与投票,最
终形成了15条推荐意见。
8.利益冲突声明:本共识所有参与编写与审核
的专家均声明不存在与本研究内容相关的利益冲
突。制订过程遵循科学、客观、透明原则,所有建议
均基于循证医学证据及专家临床经验。
二、术语
本共识涉及的术语及定义如下。
1. CRE:对任一碳青霉烯类(如美罗培南、亚胺
培南、厄他培南或多利培南)耐药或产碳青霉烯酶
的肠杆菌目细菌。特定菌属(摩根摩根菌、变形杆
菌属、普罗威登菌属等)需对除亚胺培南以外的碳
青霉烯类耐药
[1]。
2. 高毒力碳青霉烯类耐药肺炎克雷伯菌
(hypervirulent
carbapenem
resistant
Klebsiella
pneumoniae,Hv‑CRKP):同时具有碳青霉烯类耐药
性和高毒力表型的肺炎克雷伯菌。高毒力表型指菌
株因获得毒力质粒和(或)位于染色体上的毒力基因
而导致毒力增强。诊断金标准为小鼠皮下或腹腔注
射菌株的半数致死剂量(median lethal dose,LD50)≤
10
6菌落形成单位(colony‑forming unit,CFU)
[2]。
3.碳青霉烯酶:一类能水解碳青霉烯类药物的
β‑内酰胺酶
[3]。
4.丝氨酸β‑内酰胺酶:一类以丝氨酸为活性位
点的β‑内酰胺酶,主要包括超广谱β‑内酰胺酶
(extended‑spectrum β‑lactamase,ESBL)、头孢菌素
酶(AmpC β‑lactamase,AmpC)和部分碳青霉烯酶。
代表性酶型包括肺炎克雷伯菌碳青霉烯酶
(Klebsiella pneumoniae carbapenemase,KPC)及苯唑
西
林
酶(oxacillinase,OXA)部
分
亚
型
(OXA‑48)等
[4]。
5. 金属β‑内酰胺酶(metallo‑β‑lactamases,
MBL):一类能水解除单环类(如氨曲南)以外的几
乎所有β‑内酰胺类抗菌药物且活性中心含锌离子
的β‑内酰胺酶
[3],代表性酶型包括新德里MBL
(New Delhi metallo‑β‑lactamase,NDM)、亚胺培南酶
(imipenemase,IMP)和韦罗纳整合子编码MBL
(Verona
integron‑encoded
metallo‑β‑lactamase,
VIM)等
[5]。
6.流行克隆:指在流行病学上具有显著传播优
势和持续流行能力的病原体克隆谱系,其核心特征
包括基因同一性、传播优势及时空关联性,通常由
关键适应性突变驱动形成
[6]。
7.克隆扩张:指某一优势克隆通过大量增殖在
群体中占据主导地位的现象
[7]。在我国,碳青霉烯
类耐药肺炎克雷伯菌(carbapenem resistant
Klebsiella pneumoniae,CRKP)高危亚克隆
ST11‑KL64 型呈现显著扩张趋势,并具有明显表型
优势
[8]。
8. 克隆替代:指一种克隆或亚克隆逐渐被另
一种更具竞争优势的克隆或亚克隆取代的
现象
[8‑9]。
9. CRE 感染高风险患者:指因基础疾病、暴露
史或环境因素,导致CRE 定植或感染风险显著增
加的患者
[10]。其主要风险因素包括流行病学暴露
风险和患者自身临床风险两个方面。
10. 主动筛查:指在特定人群中,有计划、有系
统地对无症状个体及其环境进行检测,以早期发现
特定疾病、感染或风险因素的过程。对于CRE,是
指对高风险无症状患者主动采集肠道等部位的标
本进行筛查,利用培养或其他检测方法发现定植
者,并实施接触预防等措施以阻断传播
[11]。
三、CRE的耐药机制及传播
(一)CRE的耐药机制
抗菌药物选择压力是驱动CRE 产生与流行的
关键因素。CRE 的主要耐药机制涉及产β‑内酰胺
酶以及外膜孔道蛋白(如OmpC、OmpK 等)的突变
或缺失。在耐药机制演化方面,2010 年以前,我国
以高产ESBL 或AmpC 酶合并膜孔蛋白突变或缺失
为主
[12];2010 年后,产碳青霉烯酶逐渐确立为主要
耐药机制
[13]。截至目前,全球报道的碳青霉烯酶基
因亚型已逾500 种,其中blaKPC、blaNDM、blaIMP 和
blaOXA‑48最为常见
[14]。值得注意的是,近年已在多地
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检出同时携带两种碳青霉烯酶的CRE 菌株
[15]。此
外,tmexCD‑toprJ、mcr‑1、blaNDM、blaKPC、tet(X)等重要
耐药基因已被证实可共存于同一细菌甚至同一质
粒中
[16],揭示了耐药基因高度聚合的演进特征。目前,
尽管此类携带多种耐药基因的“超级细菌”检出率较
低,但其对全球公共卫生构成的威胁正在持续扩大。
(二)CRE对部分抗菌药物的耐药机制
1. 多黏菌素:我国多中心耐药监测数据显示,
CRE 对多黏菌素的耐药率为2.5%~4.1%
[13, 17]。
CRE 对多黏菌素的耐药机制主要涉及外膜脂多糖
修饰和外排泵过表达,其中脂多糖脂质A 修饰最为
关键。脂质A 的修饰可由染色体基因(如pmrAB、
phoPQ等双组分系统及负调控因子mgrB)突变和质
粒携带的mcr 基因所介导
[18‑20]。在肺炎克雷伯菌
中,mgrB 基因失活是导致多黏菌素耐药的主要原
因,多由插入序列介导
[21]。mcr 基因主要由大肠埃
希菌携带
[22‑23],其次是肠杆菌属
[24]及肺炎克雷伯
菌
[16],其可通过质粒在同一健康领域广泛传播
[25]。
此外,crrAB 系统突变可通过激活外排泵等方式显
著增强耐药性
[26]。
2.替加环素:我国CRE对替加环素的耐药率为
2.7%~3.5%
[13, 17],其耐药机制主要包括外排泵系统
上调和酶修饰导致的药物失活。其中,RND 家族
外排泵AcrAB‑TolC 和质粒介导的tmexCD‑toprJ 基
因是肺炎克雷伯菌对替加环素耐药的主要机制
[16]。
AcrAB‑TolC 的表达受RamA、MarA 激活及AcrR 抑
制因子失活等因素调控
[27],AcrA 和AcrB 的特定氨
基酸改变也会增强其耐药性。大肠埃希菌的耐药
性主要由AcrAB/AcrEF‑TolC 系统和质粒tet(X4)基
因编码的黄素单加氧酶引起
[28‑29]。
3.新型β‑内酰胺酶抑制剂复方制剂:包括头孢
他啶‑阿维巴坦(ceftazidime‑avibactam,CZA)、亚胺
培南‑西司他丁‑瑞来巴坦(后文简称“亚胺西瑞”)
和氨曲南‑阿维巴坦等,现在以CZA 使用最为广泛。
目前,KPC 突变是CZA 耐药的主要机制
[30‑31]。亚胺
西瑞在国内目前应用时间较短,已报道的耐药机制
包括膜孔蛋白OmpK36 突变或缺失以及与blaKPC高
表达相关
[32]。中国碳青霉烯类耐药肠杆菌目监测
网(CRE‑Network)数据显示,CRE 对氨曲南‑阿维巴
坦的敏感性为98.3%
[17],已知的耐药机制主要为
PBP3突变
[33]。
4. 头孢德罗:头孢德罗是新型铁载体头孢菌
素,利用“ 特洛伊木马”策略突破细菌外膜屏
障
[34‑35]。目前,头孢德罗已在中国获批上市。中国
CRE‑Network 数据显示,1 158 株CRE 对头孢德罗
的总体耐药率为2.7%,且耐药菌株主要见于大肠
埃希菌。对头孢德罗耐药是多重机制协同的结果,
大肠埃希菌的耐药机制尤为典型,主要机制包括铁
载体转运受体CirA 缺失,以及产NDM 酶联合
PBP3突变
[17]。
(三)CRE的耐药性传播与进化
耐药性的传播主要由克隆扩张和耐药基因水
平转移共同引起。克隆扩张在CRE 的院内传播中
更为多见。耐药基因水平转移是指耐药基因通过
可移动遗传元件在细菌间转移的过程。如
Tn125 和IS26 推动blaNDM在全球的传播
[36];以IncF
质粒家族为代表的窄宿主质粒主导了blaKPC 在
CRKP 内的传播,而广宿主范围质粒则可高效介导
耐药基因在不同种属间广泛传播
[37]。
CRE 的进化主要体现在4 个层面:一是碳青霉
烯酶变异,如新型KPC 突变体可导致对CZA 耐
药
[31];二是多种耐药基因或质粒共存,引发更广泛
的耐药表型;三是毒力与耐药特性结合,具体表现
为CRKP 获得毒力质粒或高毒力肺炎克雷伯菌获
得耐药质粒
[38];四是高危克隆的进化与扩散,形成
克隆替代。
四、流行病学
(一)CRE流行趋势及分布特点
根据2023 年世界卫生组织数据,全球肺炎克
雷伯菌对美罗培南的耐药率中位数为17.8%,显著
高于大肠埃希菌(2.0%)
[39]。各地区耐药率差异显
著:东南亚形势最严峻(CRKP 中位数为52.9%,马
尔代夫达67.6%),其次为美洲(CRKP 中位数为
22.4%,巴西最高41.0%)和非洲(CRKP 中位数为
17.2%,碳青霉烯类耐药大肠埃希菌8.3%)。欧洲
整体耐药率较低(CRKP 中位数为2.4%),但乌克
兰、俄罗斯、希腊等国家高达70% 以上。我国
CARSS数据显示,肺炎克雷伯菌对碳青霉烯类的耐
药率自2014 年以来持续上升,2020 年达11.3%,
2024年略降至10%,其中北京和上海分离株构成比
高达约25%;而大肠埃希菌始终低于2%
[40]。
现有基于人群的CRE 发病率研究较少,且国
内外差异显著。美国2012—2022 年住院患者CRE
发病率为(1.0~1.5)/万
[41];欧洲2024 年CRKP 血流
感染发病率估计为3.51/10 万人年
[42]。我国早在
2015 年住院患者CRE 发病率已达4/万人年
[43],超
越欧美同期水平。
CRE 感染相关病死率高,亟需关注。
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CRACKLE‑2研究显示,中国CRKP 感染患者的30 d
病死率(12%)低于美国(23%)和南美(28%)
[44]。欧
洲一项回顾性研究显示,CRE菌血症患者30 d病死
率高达45%
[45];南非一项为期5年的研究显示,CRE
菌血症患者住院病死率为31%
[46]。
(二)CRE优势克隆传播特点
我国CRE 中,肺炎克雷伯菌的构成比最高,其
次是大肠埃希菌和阴沟肠杆菌
[8]。CRKP 主要流行
克隆是ST11 型,而碳青霉烯类耐药大肠埃希菌的
流行克隆则以ST167、ST410型等为主。早期CRKP
优势克隆为ST11‑KL47 型,现已逐渐演化为
ST11‑KL64 型以及“BMPPS”亚克隆。该克隆株兼
具强耐药性和高毒力,已成为新兴高危型别
[8‑9]。
建议加强对ST11‑KL64 等高危克隆的持续监测,建
立“克隆型‑耐药机制‑毒力因子”联动预警体系,以
遏制其在医院及社区中的传播。
五、实验室检测
(一)表型耐药检测
CRE检测是感染防控和治疗的关键,包括药敏
试验、酶型检测两层,方法有多种,实验室可依据条
件优选方法。CRE 的检测方法和应用建议见表1。
共识推荐通过标准化流程保障检测结果可靠性,以
支持精准治疗并提升防控效果。鉴于目前产碳青
霉烯酶是介导CRE 耐药的主要机制,且最低抑菌
浓度(minimum inhibitory concentration,MIC)值因
菌种及酶型不同而存在显著差异
[13],准确测定MIC
对于耐药表型的确证具有重要意义。
推荐意见1:碳青霉烯类药敏试验推荐报告
MIC。凡非敏感菌株,均进行碳青霉烯酶检测(表
型/基因型)。在CRE 高流行地区,推荐药敏试验和
酶型检测同步进行。
(共识度:92.9%)
资源不可及时,可采用纸片扩散法进行药敏试
表1 CRE的检测方法和应用建议
检测项目
药敏试验
酶型检测
检测方法
稀释法
自动化药敏系统
纸片扩散法
浓度梯度扩散法
筛选琼脂法
mCIM、eCIM
碳青霉烯酶抑制
剂增强试验
免疫层析技术
PCR及Sanger测序a
POCT核酸检测
高通量测序b
适用标本c
菌株
菌株
菌株
菌株
临床标本
菌株
菌株
菌株或临
床标本d
菌株
菌株或临
床标本d
临床标本
时间
(h)
16~20
6~24
16~18
16~18
18~24
24~48
18~20
0.25~24
2~6
0.5~1
7~18
优点
金标准,测定MIC
操作简便,自动化程
度高
操作简便,自由度高
操作简便,可选择性强
操作简便
灵敏度高,特异度高,
成本低,可区分(单
产的)金属酶
灵敏度高,可检测同时
产双酶的菌株e
操作简便,检测时间
短,灵敏度高,可检
测同时产双酶的
菌株
检测时间短,灵敏度
高,特异度高;可确
定新亚型
操作简便,检测时间
短,灵敏度高,特异
度高
检测谱广,灵敏度高
缺点
操作相对复杂
需注意产品局限性
无MIC,仅判定分类
成本高
时间长;培养阳性后还
需进行进一步确证
耗时长;无法区分同时
产双酶或丝氨酸酶
耗时长;不能检测
OXA‑48
检测范围有限,主要针
对常见酶型,不能覆
盖少见酶型
操作复杂;需要设计通
用引物,对酶基因型
进行准确分型
成本高;对新亚型或少
见酶基因型有局
限性
成本高
应用建议
参考方法
常规检测方法
常规检测方法
推荐作为药敏检测补充方法
推荐作为基层医院定植筛查的首选
方法
在具备条件的实验室作为常规检测
在具备条件的实验室作为常规检测
高风险危重患者中优先检测;可检测同
时携带KPC、NDM 双酶或KPC、
NDM、IMP、VIM、OXA 中多种酶型的
菌株,具体参考厂家说明书规定
确证试验,推荐与常规耐药表型检测方
法联合应用
具备条件的实验室可作为常规检测;可
检测同时携带KPC、NDM 双酶或
KPC、NDM、IMP、VIM、OXA多酶的基
因,具体参考厂家说明书规定
可作为常规检测方法的补充,尤其传统
诊断检测结果为阴性的重症感染;需
结合培养结果慎重解读
注:CRE 为碳青霉烯类耐药肠杆菌目;mCIM 为改良碳青霉烯灭活试验;eCIM 为EDTA 改良碳青霉烯灭活试验;PCR 为聚合酶链反应;
POCT 为即时检测;MIC 为最低抑菌浓度;OXA‑48 为苯唑西林酶48 亚型;KPC 为肺炎克雷伯菌碳青霉烯酶;NDM 为新德里金属β‑内酰胺酶;
IMP为亚胺培南酶;VIM为韦罗纳整合子编码金属β‑内酰胺酶;OXA为苯唑西林酶;
a通常需要设计基因全长引物,PCR产物回收后进行Sanger
测序;
b高通量测序指宏基因组二代测序、靶向基因组二代测序;
c菌株为肠杆菌目细菌;
d免疫层析技术和POCT 核酸检测的适用标本类型(通
常是直肠拭子),应遵循厂家说明书规定,且严格执行标本前处理程序;
e我国双酶常见为KPC(丝氨酸酶)+NDM(金属酶)
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验。当药敏结果为非敏感时,需进行MIC 方法(包
括浓度梯度扩散法、稀释法等)复核,同时进行碳青
霉烯酶检测
[47]。目前,国内已有厂商生产针对碳青
霉烯酶检测的联合药敏板卡
[48]。
推荐意见2:实验室可采用改良碳青霉烯灭活
试验联合EDTA 改良碳青霉烯灭活试验检测或者
碳青霉烯酶抑制剂增强试验初步确定碳青霉烯酶
大体类型。
(共识度:100.0%)
明确碳青霉烯酶的酶型,是临床实施靶向用药
的重要依据。推荐采用改良碳青霉烯灭活试验
(modified carbapenem inactivation method,mCIM)联
合EDTA 改良mCIM(EDTA‑modified carbapenemase
inactivation method,eCIM)辨别是否为金属酶。该
方法操作简单适用于常规实验室。碳青霉烯酶抑
制剂增强试验利用硼酸和EDTA 抑制酶原理,同样
可区分金属酶且操作简便。Carba NP 试验具有操
作快速的优势,但可能漏检OXA型酶。
(二)核酸检测
碳青霉烯酶基因型检测在CRE 的快速识别和
精准溯源中具有重要价值,尤其适用于快速判断碳
青霉烯酶类型,辅助指导药物选择与感染防控。
推荐意见3:为实施精准靶向治疗,推荐对
CRE 进行碳青霉烯酶基因检测。推荐具备条件的
实验室优先采用免疫层析技术进行酶型快速检测,
以提升危重患者诊疗效率;同时推荐应用快速核酸
检测技术,针对常见碳青霉烯酶基因(如blaKPC、
blaNDM、blaIMP等)实现快速报告。
(共识度:90.5%)
免疫层析技术可在15~30 min 内鉴定出KPC、
NDM、VIM、IMP、OXA‑48 型碳青霉烯酶,其灵敏度
和特异度均≥98%
[49],适用于血培养阳性标本或纯
菌落的快速检测,有助于及时指导临床用药。核酸
检测技术中,常见靶基因包括blaKPC、blaNDM、blaIMP、
blaOXA‑48及blaVIM等,检测技术主要包括聚合酶链反
应(polymerase chain reaction,PCR)和终止法测序
(也称作Sanger 测序),即时检验的核酸检测(如
GeneXpert Carba‑R)
[50‑51]及高通量测序等
[52]。明确
酶型分型是指导新型酶抑制剂复合制剂应用的关
键。由于CZA、亚胺培南‑瑞来巴坦和美罗培南‑韦
博巴坦等新药对NDM、VIM、IMP 等金属酶无效,因
此依据快速检测报告精准区分酶型,不仅能避免无
效治疗,更为临床合理使用新型抗菌药物、实施靶向
治疗提供了核心依据。因此,在实际诊疗中,需将
基因型检测结果与药敏表型、感染部位及患者病情
等多因素综合解读,以优化CRE感染的治疗策略。
对于表型检测提示碳青霉烯酶阳性但酶型不
确定的菌株,可采用蛋白检测、多重PCR 等方法检
测blaKPC、blaNDM、blaIMP等常见基因,必要时可用测序
确定是否存在双酶或多酶。
(三)抗CRE药敏检测
推荐意见4:在CRE 检出率高(>10%)的医疗
机构,推荐常规检测并报告抗CRE 药物的敏感性。
(共识度:100.0%)
感染性疾病治疗领域,如果耐药率超过10%,
则经验治疗时需要考虑其他替代用药。药敏试验
应涵盖以下药物(包括但不限于):CZA、多黏菌素
类、替加环素、依拉环素、头孢德罗、亚胺培南‑瑞来
巴坦、氨曲南‑阿维巴坦及美罗培南‑法硼巴坦等。
目前,国内已有商品化检测试剂的药物包括CZA、
多黏菌素类和替加环素。依拉环素、头孢德罗、亚
胺培南‑瑞来巴坦、氨曲南‑阿维巴坦及美罗培南‑法
硼巴坦的相关检测试剂尚处于注册阶段。根据国
外研究数据,亚胺培南‑瑞来巴坦和美罗培南‑法硼
巴坦的纸片扩散法分类一致率较低(仅为73.1%),
而Etest 法和肉汤微量稀释法的一致率可达90% 以
上
[53]。药敏试验的方法学正式应用前,实验室需完
成充分的性能验证。此外,实验室在报告药敏结果
时需结合耐药机制(如酶型)进行综合判断。例如,
对于产金属酶的菌株,应谨慎报告CZA、亚胺培
南‑瑞来巴坦及美罗培南‑法硼巴坦的敏感性。抗
CRE药物药敏检测方法的推荐建议见表2。
六、诊断
(一)CRE感染的临床分层诊断
推荐意见5:推荐建立“定植‑高度疑似‑确诊”
的CRE 感染分层诊断体系。结合微生物学证据与
临床症状、体征、影像学证据等进行综合判定:
(1)对于CRE 感染低风险个体,仅有微生物学证据
但缺乏感染相关临床表现者,判定为CRE 定植;
(2)对于CRE 感染高风险个体,有源自非无菌部位
的微生物学证据并伴有感染相关临床表现者,诊断
为高度疑似CRE 感染;
(3)对于无菌部位标本检出
病原体且存在临床感染证据者,确诊CRE 感染。
(共识度:95.2%)
1. CRE感染高风险人群:包括以下之一。
(1)流
行病学暴露风险:长期住院[如重症监护病房
(intensive care unit,ICU)]或长期入住医疗相关机
构(护理院、康复中心等),与已知CRE 定植或感染
者有接触;
(2)宿主易感因素:高龄(≥65 岁);免疫
功能严重受损(如实体器官移植或造血干细胞移植
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者;恶性肿瘤致中性粒细胞缺乏者;长期使用大剂
量糖皮质激素或其他免疫抑制剂者);存在严重基
础疾病(如未控制的慢性阻塞性肺疾病、支气管扩
张症、糖尿病、肝硬化、肾功能衰竭等);存在侵入性
操作或留置医疗装置、长期透析等;
(3)抗菌药物暴
露史:3 个月内曾使用过碳青霉烯类药物;
(4)既往
史:既往有CRE 感染(如肺炎、尿路感染、血流感染
等)或CRE定植史。
(5)CRE定植状态。
2. CRE 定植的判别标准:CRE 感染低风险人
群,若临床标本培养出CRE,满足以下任一条件则
判定为CRE 定植:
(1)无感染临床表现且炎症指标
正常(降钙素原<0.1 ng/ml且C反应蛋白<10 mg/L);
(2)微生物学提示低载量或污染(如痰培养半定量
++及以下,且涂片以鳞状上皮细胞为主提示口咽
污染;粪便或直肠拭子筛查阳性;尿液培养<10
5
CFU/ml 且无脓尿、尿路症状或无症状菌尿);
(3)临
床明确诊断为非感染性疾病(如急性心力衰竭、肺
栓塞、药物热、肾上腺危象等)。需要注意:在ICU
等高暴露风险环境中的患者检出CRE 需排除环境
暴露导致的定植,对于气道开放(如机械通气)患
者,若环境中存在CRE 污染(如呼吸机管路/床单元
培养阳性)或同病区其他患者确诊CRE 感染,检出
CRE也应优先考虑定植。
3. CRE高度疑似感染的判别标准:CRE感染高
风险人群,存在感染相关临床表现,分离自非无菌
部位标本(如痰液、支气管肺泡灌洗液、尿液标本、
伤口/脓液标本、引流液、粪便等),CRE 检测阳性,
排除其他病因所致临床表现。注意相关标本的分
析前质量,质量判断不合格标本的分离株不纳入分
析判别,以避免污染标本导致过度诊断。
4. CRE 确诊感染的判别标准:无菌部位标本
CRE 检测阳性(微生物学证据),指CRE 菌株分离
自严格无菌部位标本(包括血液、脑脊液、胸/腹腔
积液、心包积液、关节液,或经规范无菌操作获取的
深部组织/脓液)。且具有以下明确临床感染证据
之一:
(1)感染相关症状/体征:存在全身性感染征
象(如发热、寒战、低血压、意识状态改变等)和(或)
局部感染特异性症状/体征(如肺炎导致咳嗽咳痰
伴呼吸困难等;腹腔感染导致腹膜刺激征;尿路感
染导致尿路刺激征伴腰痛等)
[58];(2)炎症反应证
据:炎症标志物升高(建议判断标准为降钙素原≥
0.5 ng/ml
[59]或C反应蛋白>50 mg/L
[60‑61]);
(3)影像学
支持:感染部位的影像学检查(如胸部X 线、CT、超
声,腹部超声、CT,超声心动图等)明确显示与临床
表现相符的感染灶(如肺部浸润实变/空洞、腹腔脓
肿/包裹性积液、感染性心内膜炎赘生物等)。
(二)对确诊CRE 感染患者进行全身感染及严
重程度评估
推荐意见6:推荐对CRE 感染者进行病情评
估,包括全面细致查体、积极寻找并控制感染源、根
据感染部位及时采集微生物标本等。(共识度:
100.0%)
临床医学对具体患者进行病情评估、诊断,基
本原则包括整体性、辩证性、动态性、循证性、个体
性、一元论、概率论、安全性等
[62‑64]。基于主诉和临
床表现,需要进行全面细致的查体及基本检查。对
感染性疾病而言,基本检查包括微生物学检查、免
疫能力和炎症检查等。
表2 抗CRE药物的药敏检测方法推荐、结果判定及注意事项
药物
头孢他啶‑阿维巴坦
替加环素
依拉环素
多黏菌素类
氨曲南‑阿维巴坦
亚胺培南‑瑞来巴坦
美罗培南‑法硼巴坦
头孢德罗
推荐检测方法
纸片扩散法;自动化药敏系统;浓度梯度扩散
法;BMD
纸片扩散法;自动化药敏系统;浓度梯度扩散
法;BMD
纸片扩散法;自动化药敏系统;浓度梯度扩散
法;BMD
BMD是唯一参考方法;CBDE和CAT试验
纸片扩散法;浓度梯度扩散法;BDE试验
浓度梯度扩散法;BMD
浓度梯度扩散法;BMD
参考方法为BMD,需使用ID‑CAMHB(铁离
子≤0.03 μg/ml);纸片扩散法
结果判定与注意事项
纸片扩散法抑菌圈直径20~22 mm时,需用MIC试验确认[54]
折点参照NMPA,纸片扩散法无法准确检测耐药菌株[55]
国家卫生健康委临床抗微生物药物敏感性折点标准[56]
药敏试验多黏菌素E 与多黏菌素B 等效[54],需要注意多黏菌素异质性
耐药
推荐金属酶流行区域检测
需结合耐药机制(酶型)综合判定[47]
对OXA‑48无效[47]
推荐金属酶流行区域检测(注意:头孢德罗的纸片法和BMD 结果的准
确性和重复性受试剂的影响较大[57])
注:CRE 为碳青霉烯类耐药肠杆菌目;BMD 为肉汤微量稀释法;CBDE 为黏菌素肉汤纸片洗脱试验;CAT 为黏菌素琼脂试验;BDE 为肉汤
纸片洗脱试验;ID‑CAMHB为乏铁阳离子校准MH肉汤;MIC为最低抑菌浓度;NMPA为国家药品监督管理局;OXA‑48为苯唑西林酶48亚型
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感染源控制是治疗CRE 感染,尤其是播散性
感染的关键。出现以下证据考虑有全身播散:CRE
感染者治疗过程中感染中毒症状无改善,血培养阳
性(特别是多次或持续阳性)者从远隔部位(非原发
感染灶)分离到同种CRE,或出现无法用原发感染
灶解释的、新的器官系统感染症状/体征(如神经症
状、骨关节剧痛、皮肤新发脓肿、眼内炎等)。CRE
感染的全身播散是急危重症,需快速识别、综合评
估、强力干预和密切监测。对高风险患者保持高度
警惕,积极寻找播散证据,及时采取有效的综合治
疗是改善预后的关键。控制感染源包括:
(1)移除
感染装置,如拔除可疑导管等;
(2)实施外科干预,
如脓肿引流、坏死组织的清创等。针对CRE 感染
可能存在全身播散,建议对器官功能进行评估,推
荐序贯器官衰竭评估(sequential organ failure
assessment,SOFA)评分及急性生理与慢性健康评
分(acute physiology and chronic health evaluation,
APACHE)Ⅱ等。评分高提示预后不良。
七、治疗
推荐意见7:针对CRE 的抗感染治疗策略需要
综合考虑患者的感染部位、耐药机制(特别是碳青
霉烯酶类型)和药敏试验结果进行优化选择。
(共识
度:100.0%)
对感染性疾病进行治疗时,感染部位、严重程
度和微生物是必须考虑的几个要素。其中微生物
角度包括微生物的种属、毒力、浓度、耐药特点(耐
药机制、耐药率或药敏试验结果、特殊耐药性等)。
原则上,抗感染治疗需要综合考虑这些因素。
首选根据药敏结果选择敏感药物治疗,如果药
敏结果不可及或无法快速获得,酶型与基因型检测
可以辅助精准用药。目前中国已上市治疗CRE 感
染的药物包括:硫酸多黏菌素B、多黏菌素E甲磺酸
钠、替加环素、磷霉素、CZA、依拉环素、头孢德罗、
氨曲南‑阿维巴坦和亚胺西瑞。即将上市的药物包
括美罗培南‑法硼巴坦。国内未上市,需要国际、国
内进一步积累临床数据的药物有头孢吡肟‑他尼硼
巴坦
[65‑66],以及中国自主研发已完成细菌性肺炎
Ⅲ期临床试验的亚胺培南‑福诺巴坦
(imipenem‑funobactam;funobactam即XNW4107)。
推荐意见8:对产碳青霉烯酶CRE,可根据酶
型选择药物。
(1)对产KPC 酶的CRE,可选用CZA、
亚胺西瑞和美罗培南‑法硼巴坦;头孢德罗可作为
备选用药。
(2)对产OXA‑48酶的CRE,可选用CZA;
头孢德罗可作为备选。
(3)对产金属酶的CRE,首选
氨曲南‑阿维巴坦,也可选择氨曲南联合CZA,或氨
曲南联合亚胺西瑞(需除外同时产OXA‑48),或头
孢德罗。
(共识度:95.2%)
针对产不同碳青霉烯酶类型CRE 的治疗药
物
[67‑72]的选择方案见表3。常用治疗药物用法及不
良反应见表4 和药物说明书。需注意美罗培南‑法
硼巴坦尚未在中国上市。
新型β‑内酰胺酶抑制剂复方制剂不可及地区,
针对特定感染部位或者疗效不确切等情况需要考
虑以β‑内酰胺类联合替加环素、依拉环素或多黏菌
素为主的联合治疗;对于产KPC 酶或OXA‑48 酶的
CRE感染患者,CZA 与其他抗菌药物联合应用是否
优于其单药应用存在争议。荟萃分析显示,CZA 单
药对比CZA联合氨曲南,两组患者微生物清除率和
死亡率差异均无统计学意义
[75]。
推荐意见9:对非产碳青霉烯酶CRE(通常由
ESBL/AmpC 酶合并外膜孔蛋白缺失导致耐药),如
果对美罗培南或亚胺培南敏感(MIC≤1 μg/ml),仅对
厄他培南耐药,则推荐美罗培南治疗,并延长输注时
间(如3 h)。因无额外获益,不推荐使用新型β‑内酰
胺酶抑制剂复方制剂(如CZA等)。
(共识度:100.0%)
2026 版CLSI M100 文件里,美罗培南和亚胺培
南敏感的折点是MIC=1 μg/ml,厄他培南MIC=
0.5 μg/ml,等于或低于该值即敏感
[47]。按照国家抗
菌药物临床应用指导原则
[76]、国内指南
[77]和国际指
南
[72]和CLSI M100 文件规则,碳青霉烯类单药准确
测定为敏感时,有指南推荐的情况下,可以考虑临
床应用。因为有碳青霉烯类单药可以使用,所以新
型β‑内酰胺酶抑制剂复方制剂不是首选药物。
推荐意见10:对非产碳青霉烯酶CRE(通常由
ESBL/AmpC 酶合并外膜孔蛋白缺失导致耐药),如
果对所有碳青霉烯类均不敏感,则推荐首选:CZA、
亚胺西瑞、美罗培南‑法硼巴坦。替代治疗药物包
括:头孢德罗、多黏菌素、替加环素和依拉环素(仅
用于非血流/非肺部/非尿路感染,如腹腔、皮肤软组
织感染)。
(共识度:100.0%)
根据2024 年美国感染性疾病学会革兰阴性耐
药菌治疗指引
[72],不产碳青霉烯酶的CRE 治疗选
择较多。目前新型β‑内酰胺酶抑制剂复方制剂(不
包括氨曲南‑阿维巴坦)和头孢德罗都可以覆盖,
具体参见表4;而传统的治疗药物如多黏菌素等,
也可以覆盖。
推荐意见11:当前除了针对MBL 的氨曲南联
合治疗外,CRE感染的联合治疗相比单药治疗临床
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获益存在争议,仅在特定情况下推荐进行联合用药
治疗。具体包括:
(1)特定靶器官或组织感染:对于
中枢神经系统感染或药物难以达到有效浓度的特
定感染部位,考虑联合用药;(2)单药治疗存在局
表3 针对产不同碳青霉烯酶类型CRE的治疗药物选择
碳青霉烯酶类型
KPC(丝氨酸酶)
OXA‑48(丝氨酸酶)
MBL(NDM/VIM/IMP,
金属酶)
KPC+MBL或OXA‑48+
MBL
首选方案
头孢他啶‑阿维巴坦;
亚胺西瑞;
美罗培南‑法硼巴坦a
头孢他啶‑阿维巴坦
氨曲南‑阿维巴坦(单药);
头孢他啶‑阿维巴坦+氨曲南b;
亚胺西瑞+氨曲南;
头孢德罗
氨曲南‑阿维巴坦c;
头孢德罗
替代方案
头孢德罗;
替加环素/依拉环素(非血流/非
尿路感染);
多黏菌素
头孢德罗;
替加环素/依拉环素(非血流/非
尿路感染);
多黏菌素
替加环素/依拉环素(非血流/非
尿路感染);
多黏菌素
对KPC/OXA‑48+MBL:氨曲南+
头孢他啶‑阿维巴坦;
对KPC+MBL:氨曲南+亚胺西瑞;
依拉环素,替加环素;
多黏菌素
备注
(1)三种首选药对KPC 菌株活性>95%[73];
(2)关注
CZA治疗CRE感染中出现的耐药问题。blaKPC基
因突变(如blaKPC‑33)可能导致CZA 耐药,但对碳
青霉烯类药物恢复敏感;部分变异体对两者均耐
药[74]。因此,初始CZA敏感的CRE感染者,若治
疗期间CZA疗效下降,应及时复查其药敏试验
法硼巴坦和瑞来巴坦不能有效抑制OXA‑48,不推
荐使用亚胺西瑞和美罗培南‑法硼巴坦
(1)氨曲南不被MBL 水解,但可被共存的ESBL 等
酶水解;(2)阿维巴坦可抑制ESBL,保护氨曲
南;
(3)四者无直接对比数据,同为首选;
(4)联
合用药需监测肝毒性;
(5)亚胺西瑞联合氨曲南
的体外和临床数据有限;(6)暂无美罗培南‑法
硼巴坦的联合用药临床数据
(1)此建议根据回顾性研究结论等[74]形成,暂无严
格设计的临床对照试验证据;
(2)注意肝毒性等
监测;
(3)靶向治疗阶段需要体外敏感性试验结
果证实对所用药物敏感;
(4)氨曲南+亚胺西瑞
方案,需要除外OXA‑48 like酶
注:CRE 为碳青霉烯类耐药肠杆菌目;KPC 为肺炎克雷伯菌碳青霉烯酶;OXA‑48 为苯唑西林酶48 亚型;MBL 为金属β‑内酰胺酶;NDM 为
新德里金属β‑内酰胺酶;VIM为韦罗纳整合子编码金属β‑内酰胺酶;IMP为亚胺培南酶;CZA为头孢他啶‑阿维巴坦;ESBL为超广谱β‑内酰胺酶;
a
美罗培南‑法硼巴坦尚未在中国上市;
b头孢他啶‑阿维巴坦+氨曲南主要用于治疗产金属酶的CRE 感染,两药需同步输注方可保持协同效应;
c
有条件使用氨曲南‑阿维巴坦则优选单药;根据本地药物可及性和药敏结果,还可以选择多黏菌素+依拉环素或替加环素、多黏菌素+磷霉素、
依拉环素或替加环素+磷霉素、碳青霉烯类+多黏菌素、碳青霉烯类+依拉环素或替加环素等组合方案,但获益证据均低于上述表格中的推荐
表4 CRE的常用治疗药物用法及不良反应
药物名称
头孢他啶‑阿维巴坦
氨曲南‑阿维巴坦
亚胺西瑞
美罗培南‑法硼巴坦
头孢德罗
用法用量
(1)成人:2.5 g(2.0 g/0.5 g)每8 小时1 次,每次输注3 h;与氨曲南联合应用:CZA 2.5 g,
每8小时1次,输注>3 h;氨曲南2.0 g,每8小时1次,输注>3 h,与CZA 同时输注(建议
使用Y型管);
(2)儿童:3~6 个月:头孢他啶40 mg/kg 每次+阿维巴坦10 mg/kg 每次,每8 小时1 次,输
注>2 h;6 个月~2 岁:头孢他啶50 mg/kg 每次+阿维巴坦12.5 mg/kg 每次,每8 小时
1 次,输注>2 h;2~18 岁:头孢他啶50 mg/kg 每次(最大2.0 g)+阿维巴坦10 mg/kg 每次
(最大0.5 g)每8小时1次,输注>2 h
(1)成人:首次负荷剂量2.67 g(2.00 g/0.67 g),输注30 min;之后维持剂量2.0 g
(1.5 g/0.5 g)每6小时1次,每次输注3 h;
(2)儿童:目前尚无儿童中应用氨曲南‑阿维巴坦的安全、有效性研究。药品说明书指出
尚无其在18岁以下人群的安全性和有效性数据
(1)成人:1.25 g,每6小时1次,输注>30 min,肾功能不全患者需根据血肌酐调整剂量;
(2)儿童:NMPA 说明书显示尚未确定其在18 岁以下儿童和青少年患者中的安全性和
有效性
(1)成人:标准剂量为美罗培南(2.0 g)+法硼巴坦2.0 g(4.0 g)每8小时1次,输注3 h;
(2)儿童:EMA 和FDA 说明书均显示目前尚无批准儿童适应证或剂量,安全性/有效性
未确立
(1)成人:CLcr 60~119 ml/min 的患者,每3 小时静脉输注2 g,每8 小时注射1 次;CLcr<
60 ml/min或CLcr>120 ml/min的患者需要调整剂量;
(2)儿童:NMPA说明书尚未批准儿童适应证
不良反应
过敏反应;中枢神经系统反
应,如癫痫发作
贫血;腹泻;丙氨酸转氨酶升
高,天冬氨酸转氨酶升高;
大多数不良反应为轻中度
贫血;腹泻;大多数不良反应
为轻度
尚无国内数据
过敏反应;艰难拟梭菌引起
的腹泻和癫痫发作
注:CRE 为碳青霉烯类耐药肠杆菌目;CZA 为头孢他啶‑阿维巴坦;NMPA 为国家药品监督管理局;EMA 为欧洲药品管理局;FDA 为美国食
品药品监督管理局;CLcr为肌酐清除率
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限:现有单药治疗存在体外抗菌活性不足或者因剂
量受限而存在较大的失败可能性,考虑联合用
药;
(3)危重症全身性感染:对于合并脓毒性休克或
多器官功能衰竭的极重症患者,部分证据提示早期
合理联合治疗可能有助于降低病死率;
(4)新型抗
菌药物不可及或存在耐药:当新型β‑内酰胺酶抑制
剂复方制剂和头孢德罗不可及或对其耐药时,可以
根据敏感性情况考虑新型四环素、氨基糖苷类、多
黏菌素类等药物的联合治疗。
(共识度:92.9%)
近期的临床研究
[78‑80]以及荟萃分析
[81‑82]都没有
得出单药治疗和联合用药治疗彼此优劣的明确结
论,因此美国感染性疾病学会指引
[72]、欧洲临床微
生物学和感染性疾病学会指南
[83]以及近期综
述
[84‑85]等对联合治疗都没有明确推荐,而单药治
疗
[86]在临床研究中有明确效果。CRE 感染治疗药
物选择详见以下单药方案和联合用药方案。
1. 单药方案:
(1)对于肺部感染、血流感染、腹
腔感染等,首选方案:使用具有抗CRE 活性的β‑内
酰胺类药物,如CZA
[87‑88]、亚胺西瑞
[66]、美罗培南‑法
硼巴坦
[89]或头孢德罗。(2)对于尿路感染:单纯性
膀胱炎首选方案:对病原体敏感的药物,包括
呋
喃
妥
因
、复
方
磺
胺
甲
噁
唑
(trimethoprim‑sulfamethoxazole,TMP‑SMX)、环丙沙
星或左氧氟沙星。替代方案:氨基糖苷类(可单剂
治疗)、磷霉素(仅限大肠埃希菌感染),以及β‑内酰
胺类药物(如CZA、亚胺西瑞、美罗培南‑法硼巴坦
或头孢德罗)。肾盂肾炎/复杂性尿路感染首选方
案:若药敏试验显示敏感,可选用TMP‑SMX、环丙
沙星或左氧氟沙星。优先使用新型β‑内酰胺酶抑
制剂复方制剂,如CZA、亚胺西瑞、美罗培南‑法硼
巴坦或头孢德罗。替代方案:可考虑氨基糖苷类。
需要注意的是,磷霉素因在肾实质中浓度低且临床
数据有限,而替加环素等四环素衍生物因在尿路中
浓度低,均不推荐用于此类感染。
2. 联合用药方案
[82, 90]:(1)以多黏菌素为基础
的联合方案:可将多黏菌素与碳青霉烯类(要求
MIC≤8 μg/ml)、替加环素/依拉环素或磷霉素联用。
需要注意的是:必要时进行治疗药物监测;应避免
与氨基糖苷类联用,以免显著增加肾毒性和神经毒
性。某些特殊性感染(如血流感染、院内获得性肺
炎等)可以考虑含有硫酸多黏菌素B 的联合治疗方
案。注意给药剂量需根据患者实际体重计算。尿
路感染可以考虑含有甲磺酸多黏菌素E 的联合治
疗方案。注意静脉给药时必须给予负荷剂量。对
于肺部感染,雾化吸入甲磺酸多黏菌素E 联合静脉
用药可能提高疗效。
(2)金属酶的联合治疗推荐方
案:氨曲南联合CZA 是治疗产金属酶(如NDM、
VIM)CRE 的首选方案之一。这是由于氨曲南对金
属酶稳定,而CZA 能抑制其常伴的其他β‑内酰胺
酶,从而产生协同治疗作用。氨曲南和新型β‑内酰
胺酶抑制剂复方制剂如亚胺西瑞的联合治疗亦有协
同作用
[91‑93](有限的体外、临床及指南推荐证据)。
需要注意的是,以上这些联合治疗的推荐主要基于
当前体外实验和回顾性研究,尚缺乏大规模前瞻性
随机对照试验证据。
CRE 非抗菌药物治疗新方法,包括噬菌体治
疗
[94]、微生态治疗(如粪便菌群移植)
[95]、抗菌肽治
疗
[96]、抢先性粒细胞输注
[97]等。但相应证据不足,
不能形成共识性建议,仅供参考。对于全耐药CRE
引起的难治性感染,可基于医疗单位的条件和患者
的情况开展临床研究或个体化考虑。
八、感染控制
(一)CRE主动筛查
推荐意见12:推荐对CRE感染的高风险患者进
行CRE主动筛查,入院时及入院后每周1次,直至出
院;推荐肠道来源标本为首选筛查部位,采用≥2 个
部位进行主动筛查以提高检出率。
(共识度:92.9%)
为遏制CRE 的暴发和传播,对疑似CRE 携带
者进行主动筛查已成为国际共识。具备筛查条件
的医疗机构应尽可能开展。每周1 次是相对合适
的频次。肠杆菌目细菌主要在肠道定植,故而肠道
为首选部位。除肠道外,呼吸道标本、皮肤拭子及
伤口分泌物等标本也可作为筛查标本
[98]。对CRE
隔离患者,解除隔离时可以选择与筛查相同的标本
进行检测。
根据当地的耐药监测数据及风险评估结果,
不同医疗机构可自行调整主动筛查方案及筛查频
率
[99]。CRE 不同检测方法优缺点及适用范围各不
相同
[100],不同实验室可根据实际情况进行选择。
(二)CRE暴发/聚集性事件的预警与溯源
推荐意见13:对于有条件的医疗机构,出现
CRE 暴发或聚集性事件时,推荐在ICU 等高风险科
室每周对入住患者、医务人员(必要时)和关键环境
点位应用富集培养与全基因组测序技术进行CRE
筛查。
(共识度:90.5%)
暴发和聚集性事件是临床感染控制最敏感的
情况,需要高度重视并在第一时间及时处理。医疗
机构中,不同科室、同一科室不同位点的风险不同,
中华医学杂志 2026 年5 月26 日第 106 卷第 19 期 Natl Med J China, May 26, 2026, Vol. 106, No. 19
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不同人员身份的风险不同,需要区别对待。而处理
的最基本前提就是明确微生物学相关信息,如种
属、毒力、耐药性、传染源、传播途径、易感人群等。
当医疗机构出现CRE 暴发或聚集性事件时,
推荐采用全基因组测序(whole genome sequencing,
WGS)技术联合适当的分析软件进行快速溯源。对
于不具备上述条件的医疗机构,可根据菌种鉴定结
果、抗菌药物敏感性结果对CRE 菌株的同源性进
行初步判断,必要时可加用一定的分型方法如多位
点序列分型分析。若高度一致,可初步判断疑似同
源。溯源分析中,WGS 采用严格的核酸分型标准:
克隆传播关系通常定义为单核苷酸多态性差异5~
10 个核苷酸位点或核心基因组多位点序列分型等
位基因差异5~10 个位点,可因不同病原和暴发延
续时间而调整
[101‑102]。进行溯源分析时,可通过比
对核心基因组区域序列的一致性进行判定。当序
列一致性≥99.9%时,可确认为同源性传播
[103]。
环境监测重点关注呼吸机、监护设备表面,以
及洗手池、地漏等潮湿环境,通过构建环境微生物
图谱识别潜在病原体储存库
[104]。有条件的医院可
建立耐药菌基因组本地数据库,以实现对历史数据
的快速检索,发现反复出现或短期内连续出现的克
隆,一旦怀疑出现CRE 暴发/聚集性事件,立即启动
感控措施。
借助一些高效的分析软件如PathoTracker宏基
因组在线分析平台可实现基于宏基因组数据对
CRKP 菌株的院内感染暴发进行快速预警和溯源
分析
[105]。对于CRKP菌株,也可采用多重PCR进行
荚膜血清型分析,以尽早发现高风险高毒力克隆,
降低毒力质粒传播扩散风险
[72]。不同实验室应根
据自身所具备的技术条件,选择适宜的溯源分析
方法。
(三)CRE处置:感染灶控制、隔离、预防用药
推荐意见14:推荐对CRE 筛查阳性的患者采
取隔离措施。对于有条件的医疗机构,推荐对筛查
阳性的ICU 患者每日使用2% 葡萄糖酸氯己定进行
全身擦拭。对于肠道定植患者,不建议使用抗菌药
物进行去定植处置。
(共识度:92.9%)
目前世界卫生组织
[106]、国际组织
[107]、意大利卫
生管理部门
[108]的感染控制文件都主张对CRE 筛查
阳性的患者应采取接触隔离措施,包括单间隔离或
将其与其他CRE 携带者集中安置,并联合主动筛
查培养,以预防医院内传播。
虽推荐2%葡萄糖酸氯已定擦拭作为环境减菌
手段,但应监测局部菌株对氯己定敏感性的变化,
避免由于过度使用导致耐药基因(如qacA/B)的共
进化。有条件的医疗机构建议单人单间隔离,并设
立单独的卫生间;当隔离单间不够时,可将大小便
失禁、使用侵入性设备,或伤口持续有分泌物的患
者优先进行单人单间隔离;可将感染或定植CRE
同一菌种的其他患者隔离在同一多人间内;对CRE
感染或定植患者,可分组护理;对隔离患者,不建议
设陪护人员。对连续两次采样阴性,且采样时间相
隔24 h 或以上的长期住院患者,可以考虑解除
隔离。
目前对CRE 肠道定植,尚无应用抗菌药物、益
生菌及相关产品去定植的明确证据
[109]。
推荐意见15:推荐建立区域性CRE 定植/感染
患者预警系统。在患者转出或转入时,必须在转诊
单中明确标注CRE 携带状态,实施“信息先导”的
预防性隔离。
(共识度:95.2%)
除了常规的医院感染控制措施外,患者在医疗
机构或院区之间的转诊是导致CRE 扩散的关键风
险点。建议建立区域性的CRE定植/感染患者预警系
统
[110]。严格执行转诊标准,在转出及转入时,需在转
诊文书中对患者CRE携带状态进行明确标注
[111],坚
持“信息先导”原则,落实预防性隔离措施
[112]。
针对CRE 的感染控制工作,还涉及抗菌药物
管理策略,应基于“结构‑过程‑结果”全链条管理框
架实施抗菌药物管理策略
[113‑114];多方面合作,包括
医疗机构内和社会不同角度,应分别建立多学科合
作机制、多方协作机制(如“克隆‑耐药机制‑毒力因
子”联动为核心的综合监测模式,数据共享监测网
络)等。
综上,CRE感染的流行已对临床医疗安全构成
了重大威胁,形势不容乐观,将其列为临床重点关
注与治理的关键问题刻不容缓。为此,本共识汇聚
了多学科专家智慧,旨在为临床医师、检验人员及
感控工作者提供一套从早期精准筛查、快速诊断到
合理用药及科学防控的“全流程”实操指导和推荐。
本共识致力于通过规范化的推荐意见,为抗击CRE
感染提供有力的武器。此外,随着新证据的涌现和
治疗手段的革新,持续进行迭代更新,从而更好地
应对未来可能出现的耐药困局。
本共识制订专家委员会名单
共识领导组:王辉(北京大学人民医院检验科);曹彬(中日
友好医院呼吸与危重症医学科)
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中华医学杂志 2026 年5 月26 日第 106 卷第 19 期 Natl Med J China, May 26, 2026, Vol. 106, No. 19
共识执笔组(按内容顺序):王若冰(北京大学人民医院检验科);
李敏(上海交通大学医学院附属仁济医院检验科);余方友
(同济大学附属上海市肺科医院检验科);吴文娟(同济大学
附属东方医院南院检验科);王一民(中日友好医院呼吸与
危重症医学科);苏欣(南京大学医学院附属鼓楼医院呼吸
与危重症医学科);张嵘(浙江大学医学院附属第二医院
检验科)
共识统筹组(按内容顺序):王启(北京大学人民医院检验科);
王业明(中日友好医院呼吸与危重症医学科);宁永忠(清华
大学附属垂杨柳医院检验科)
共识制订专家组(按姓氏汉语拼音排序):冯友军(浙江大学
基础医学院微生物学系);顾兵(南方医科大学附属广东省人民
医院检验科);谷丽(首都医科大学附属北京朝阳医院感染和
临床微生物科);孔旭东(中日友好医院药学部);廖康(中山
大学附属第一医院检验科);刘波(潍坊市人民医院呼吸内科
医学中心);刘学东(青岛市市立医院呼吸与危重症医学科);
鲁炳怀(中日友好医院呼吸与危重症医学科临床微生物与
感染实验室);王启(北京大学人民医院检验科);王新宇(复旦
大学附属华山医院感染科);魏莲花(甘肃省人民医院检验
中心);杨青(浙江大学医学院附属第一医院检验科);喻华
(四川省医学科学院·四川省人民医院临床医学检验中心);
曾吉(武汉市第四医院检验科);张利侠(陕西省人民医院
检验科);赵彩彦(河北医科大学第三医院感染科);赵鸿(北京
大学第一医院感染科);赵建宏(河北医科大学第二医院
河北省临床检验中心)
共识审校组(按姓氏汉语拼音排序):邓继岿(深圳市儿童医院
感染科);谷晓颖(中日友好医院呼吸中心);胡必杰(复旦
大学附属中山医院感染性疾病科);刘钢(首都医科大学附属
北京儿童医院感染内科);佘丹阳(中国人民解放军总医院
呼吸与危重症医学部);沈宁(北京大学第三医院呼吸与危重症
医学科);田国宝(中山大学医学院免疫学教研室);王明贵
(复旦大学附属华山医院抗生素研究所);肖永红(浙江大学
医学院附属第一医院传染病重症诊治全国重点实验室);
徐金富(同济大学附属同济医院呼吸与危重症医学科);
俞云松(浙江大学医学院附属邵逸夫医院);张文宏(复旦大学
附属华山医院感染科);卓超(广州医科大学附属第一医院
感染科)
利益冲突 所有作者声明不存在利益冲突
参
考
文
献
[1]
Centers for Disease Control and Prevention (CDC).
Facility guidance for control of carbapenem‑resistant
Enterobacteriaceae (CRE) [EB/OL]. [2020‑07‑01]. http://
www.cdc.gov/hai/pdfs/cre/cre‑guidance‑508.pdf.
[2]
中国医师协会感染科医师分会, 中华预防医学会医院感染
控制分会, 中国医院协会临床微生物实验室专业委员会,
等. 高毒力碳青霉烯类耐药肺炎克雷伯菌感染诊治与防控
专家共识[J]. 中华临床感染病杂志(中英文), 2025, 18(5):
321‑338. DOI: 10.3760/cma. j. issn. 1674‑2397.2025.
05.001.
[3]
Queenan AM, Bush K. Carbapenemases: the versatile
beta‑lactamases[J]. Clin Microbiol Rev, 2007, 20(3):
440‑458. DOI: 10.1128/CMR.00001‑07.
[4]
Barrett AJ. Nomenclature Committee of the International
Union
of
Biochemistry
and
Molecular
Biology
(NC‑IUBMB). Enzyme nomenclature. Recommendations
1992. Supplement 2: corrections and additions (1994)[J].
Eur J Biochem, 1995, 232(1): 1‑6. DOI: 10.1111/
j.1432‑1033.1995.tb20774.x.
[5]
Tzouvelekis LS, Markogiannakis A, Psichogiou M, et al.
Carbapenemases in Klebsiella pneumoniae and other
Enterobacteriaceae:
an
evolving
crisis
of
global
dimensions[J]. Clin Microbiol Rev, 2012, 25(4): 682‑707.
DOI: 10.1128/CMR.05035‑11.
[6]
Cantinelli T, Chenal‑Francisque V, Diancourt L, et al.
"Epidemic
clones"
of
Listeria
monocytogenes
are
widespread and ancient clonal groups[J]. J Clin Microbiol,
2013, 51(11):3770‑3779. DOI: 10.1128/JCM.01874‑13.
[7]
Liu Q, Ma A, Wei L, et al. China′s tuberculosis epidemic
stems from historical expansion of four strains of
Mycobacterium tuberculosis[J]. Nat Ecol Evol, 2018,
2(12):1982‑1992. DOI: 10.1038/s41559‑018‑0680‑6.
[8]
Wang Q, Wang R, Wang S, et al. Expansion and
transmission dynamics of high risk carbapenem‑resistant
Klebsiella
pneumoniae
subclones
in
China:
an
epidemiological, spatial, genomic analysis[J]. Drug Resist
Updat,
2024,
74:
101083.
DOI:
10.1016/j.
drup.
2024.101083.
[9]
Zhou K, Xiao T, David S, et al. Novel subclone of
carbapenem‑resistant Klebsiella pneumoniae sequence
type 11 with enhanced virulence and transmissibility,
China[J]. Emerg Infect Dis, 2020, 26(2): 289‑297. DOI:
10.3201/eid2602.190594.
[10]
Pérez‑Galera S, Bravo‑Ferrer JM, Paniagua M, et al. Risk
factors for infections caused by carbapenem‑resistant
Enterobacterales:
an
international
matched
case‑control‑control
study
(EURECA)
[J].
EClinicalMedicine, 2023, 57: 101871. DOI: 10.1016/j.
eclinm.2023.101871.
[11]
中国碳青霉烯耐药肠杆菌科细菌感染诊治与防控专家共
识编写组, 中国医药教育协会感染疾病专业委员会, 中华
医学会细菌感染与耐药防控专业委员会. 中国碳青霉烯耐
药肠杆菌科细菌感染诊治与防控专家共识[J]. 中华医学
杂志, 2021, 101(36): 2850‑2860. DOI: 10.3760/cma. j.
cn112137‑20210219‑00438.
[12]
Yang Q, Wang H, Sun H, et al. Phenotypic and genotypic
characterization of Enterobacteriaceae with decreased
susceptibility
to
carbapenems:
results
from
large
hospital‑based
surveillance
studies
in
China[J].
Antimicrob Agents Chemother, 2010, 54(1):573‑577. DOI:
10.1128/AAC.01099‑09.
[13]
Wang Q, Wang X, Wang J, et al. Phenotypic and genotypic
characterization
of
carbapenem‑resistant
Enterobacteriaceae: data from a longitudinal large‑scale
CRE study in China (2012‑2016)[J]. Clin Infect Dis, 2018,
67(suppl_2):S196‑S205. DOI: 10.1093/cid/ciy660.
[14]
Naas T, Oueslati S, Bonnin RA, et al. Beta‑lactamase
database (BLDB)‑structure and function[J]. J Enzyme
Inhib
Med
Chem,
2017,
32(1):
917‑919.
DOI:
10.1080/14756366.2017.1344235.
中华医学杂志 2026 年5 月26 日第 106 卷第 19 期 Natl Med J China, May 26, 2026, Vol. 106, No. 19
· 1895 ·
[15]
Gao H, Liu Y, Wang R, et al. The transferability and
evolution of NDM‑1 and KPC‑2 co‑producing Klebsiella
pneumoniae from clinical settings[J]. EBioMedicine, 2020,
51:102599. DOI: 10.1016/j.ebiom.2019.102599.
[16]
Sun S, Gao H, Liu Y, et al. Co‑existence of a novel
plasmid‑mediated efflux pump with colistin resistance
gene mcr in one plasmid confers transferable multidrug
resistance in Klebsiella pneumoniae[J]. Emerg Microbes
Infect,
2020,
9(1):
1102‑1113.
DOI:
10.1080/
22221751.2020.1768805.
[17]
Wang Q, Jin L, Sun S, et al. Occurrence of high levels of
cefiderocol
resistance
in
carbapenem‑resistant
Escherichia coli before its approval in China: a report
from China CRE‑network[J]. Microbiol Spectr, 2022, 10(3):
e0267021. DOI: 10.1128/spectrum.02670‑21.
[18]
Naha S, Sands K, Mukherjee S, et al. KPC‑2‑producing
Klebsiella pneumoniae ST147 in a neonatal unit: clonal
isolates
with
differences
in
colistin
susceptibility
attributed to AcrAB‑TolC pump[J]. Int J Antimicrob
Agents,
2020,
55(3):
105903.
DOI:
10.1016/j.
ijantimicag.2020.105903.
[19]
El‑Sayed Ahmed M, Zhong LL, Shen C, et al. Colistin and
its role in the era of antibiotic resistance: an extended
review (2000‑2019) [J]. Emerg Microbes Infect, 2020,
9(1):868‑885. DOI: 10.1080/22221751.2020.1754133.
[20]
Campos MA, Vargas MA, Regueiro V, et al. Capsule
polysaccharide
mediates
bacterial
resistance
to
antimicrobial peptides[J]. Infect Immun, 2004, 72(12):
7107‑7114. DOI: 10.1128/IAI.72.12.7107-7114.2004.
[21]
Macesic N, Nelson B, Mcconville TH, et al. Emergence of
polymyxin resistance in clinical Klebsiella pneumoniae
through
diverse
genetic
adaptations:
a
genomic,
retrospective cohort study[J]. Clin Infect Dis, 2020,
70(10):2084‑2091. DOI: 10.1093/cid/ciz623.
[22]
Liu YY, Wang Y, Walsh TR, et al. Emergence of
plasmid‑mediated colistin resistance mechanism MCR‑1
in animals and human beings in China: a microbiological
and molecular biological study[J]. Lancet Infect Dis, 2016,
16(2):161‑168. DOI: 10.1016/S1473‑3099(15)00424‑7.
[23]
Wang R, van Dorp L, Shaw LP, et al. The global
distribution and spread of the mobilized colistin
resistance gene mcr‑1[J]. Nat Commun, 2018, 9(1):1179.
DOI: 10.1038/s41467‑018‑03205‑z.
[24]
Song K, Jin L, Cai M, et al. Decoding the origins, spread,
and global risks of mcr‑9 gene[J]. EBioMedicine, 2024,
108:105326. DOI: 10.1016/j.ebiom.2024.105326.
[25]
Wang R, Liu Y, Zhang Q, et al. The prevalence of colistin
resistance in Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae
isolated from food animals in China: coexistence of mcr‑1
and bla(NDM) with low fitness cost[J]. Int J Antimicrob
Agents,
2018,
51(5):
739‑744.
DOI:
10.1016/j.
ijantimicag.2018.01.023.
[26]
McConville TH, Annavajhala MK, Giddins MJ, et al. CrrB
positively regulates high‑level polymyxin resistance and
virulence in Klebsiella pneumoniae[J]. Cell Rep, 2020,
33(4):108313. DOI: 10.1016/j.celrep.2020.108313.
[27]
Wang X, Chen H, Zhang Y, et al. Genetic characterisation of
clinical Klebsiella pneumoniae isolates with reduced
susceptibility to tigecycline: role of the global regulator
RamA and its local repressor RamR[J]. Int J Antimicrob
Agents, 2015, 45(6):635‑640. DOI: 10.1016/j.ijantimicag.
2014.12.022.
[28]
Sun J, Chen C, Cui CY, et al. Plasmid‑encoded tet(X) genes
that confer high‑level tigecycline resistance in Escherichia
coli[J]. Nat Microbiol, 2019, 4(9): 1457‑1464. DOI:
10.1038/s41564‑019‑0496‑4.
[29]
Yao C, Jin L, Wang Q, et al. Unraveling the evolution and
global transmission of high level tigecycline resistance
gene tet(X) [J]. Environ Int, 2025, 199: 109499. DOI:
10.1016/j.envint.2025.109499.
[30]
Sun L, Chen W, Li H, et al. Phenotypic and genotypic
analysis of KPC‑51 and KPC‑52, two novel KPC‑2 variants
conferring resistance to ceftazidime/avibactam in the
KPC‑producing
Klebsiella
pneumoniae
ST11
clone
background[J]. J Antimicrob Chemother, 2020, 75(10):
3072‑3074. DOI: 10.1093/jac/dkaa241.
[31]
Ding L, Shen S, Chen J, et al. Klebsiella pneumoniae
carbapenemase variants: the new threat to global public
health[J]. Clin Microbiol Rev, 2023, 36(4):e0000823. DOI:
10.1128/cmr.00008‑23.
[32]
Guo Y, Yao L, Wang J, et al. Comparison of the in vitro
activities
and
resistance
mechanisms
against
imipenem‑relebactam
and
ceftazidime‑avibactam
in
clinical KPC‑producing Klebsiella pneumoniae isolated in
China[J]. Infection, 2025, 53(4):1469‑1481. DOI: 10.1007/
s15010‑025‑02474‑3.
[33]
Long H, Zhao F, Feng Y, et al. Global emergence of
Escherichia coli with PBP3 insertions[J]. J Antimicrob
Chemother, 2025, 80(1): 178‑181. DOI: 10.1093/jac/
dkae393.
[34]
Ito A, Nishikawa T, Matsumoto S, et al. Siderophore
cephalosporin cefiderocol utilizes ferric iron transporter
systems for antibacterial activity against Pseudomonas
aeruginosa[J]. Antimicrob Agents Chemother, 2016,
60(12):7396‑7401. DOI: 10.1128/AAC.01405‑16.
[35]
Choi JJ, McCarthy MW. Cefiderocol: a novel siderophore
cephalosporin[J]. Expert Opin Investig Drugs, 2018, 27(2):
193‑197. DOI: 10.1080/13543784.2018.1426745.
[36]
Acman M, Wang R, van Dorp L, et al. Role of mobile
genetic elements in the global dissemination of the
carbapenem resistance gene blaNDM[J]. Nat Commun,
2022, 13(1):1131. DOI: 10.1038/s41467‑022‑28819‑2.
[37]
Cai M, Song K, Wang R, et al. Tracking intra‑species and
inter‑genus transmission of KPC through global plasmids
mining[J]. Cell Rep, 2024, 43(6):114351. DOI: 10.1016/j.
celrep.2024.114351.
[38]
Wang R, Zhang A, Sun S, et al. Increase in antioxidant
capacity associated with the successful subclone of
hypervirulent
carbapenem‑resistant
Klebsiella
pneumoniae ST11‑KL64[J]. Nat Commun, 2024, 15(1):67.
DOI: 10.1038/s41467‑023‑44351‑3.
[39]
World Health Organization (2023). GLASS manual for
antimicrobial resistance surveillance in common bacteria
causing human infection[EB/OL]. [2026‑02‑01]. https://
iris.who.int/handle/10665/372741.
[40]
全国细菌耐药监测网. 2024 年全国细菌耐药监测报告
( 简要版) [R]. [2026‑02‑01]. https://www. carss. cn/
Report/Details?aId=1036.
[41]
Wolford
H,
McCarthy
NL,
Baggs
J,
et al.
Antimicrobial‑resistant infections in hospitalized patients
[J]. JAMA Netw Open, 2025, 8(3): e2462059. DOI:
10.1001/jamanetworkopen.2024.62059.
· 1896 ·
中华医学杂志 2026 年5 月26 日第 106 卷第 19 期 Natl Med J China, May 26, 2026, Vol. 106, No. 19
[42]
European Centre for Disease Prevention and Control
(ECDC).
Antimicrobial
resistance
in
the
EU/EEA
(EARS‑Net)‑Annual Epidemiological Report for 2024[R].
Stockholm: ECDC, 2025[2026‑02‑01]. https://www.ecdc.
europa. eu/en/publications‑data/surveillance‑antimicrobial‑
resistance‑europe‑2022.
[43]
Zhang Y, Wang Q, Yin Y, et al. Epidemiology of
carbapenem‑resistant
Enterobacteriaceae
infections:
report from the China CRE network[J]. Antimicrob Agents
Chemother, 2018, 62(2): e01882‑e01817. DOI: 10.1128/
AAC.01882‑17.
[44]
Wang M, Earley M, Chen L, et al. Clinical outcomes and
bacterial
characteristics
of
carbapenem‑resistant
Klebsiella pneumoniae complex among patients from
different global regions (CRACKLE‑2): a prospective,
multicentre, cohort study[J]. Lancet Infect Dis, 2022,
22(3):401‑412. DOI: 10.1016/S1473‑3099(21)00399‑6.
[45]
Falcone M, Bassetti M, Tiseo G, et al. Time to appropriate
antibiotic therapy is a predictor of outcome in patients
with bloodstream infection caused by KPC‑producing
Klebsiella pneumoniae[J]. Crit Care, 2020, 24(1):29. DOI:
10.1186/s13054‑020‑2742‑9.
[46]
Ngoma N, Perovic O, de Voux A, et al. The impact of
colistin‑based regimens on mortality compared to other
antimicrobials in patients with carbapenem‑resistant
Enterobacterales bacteremia in South African hospitals: a
cross‑sectional study[J]. BMC Infect Dis, 2024, 24(1):561.
DOI: 10.1186/s12879‑024‑09459‑x.
[47]
Clinical
and
Laboratory
Standards
Institute.
CLSI
document
M100
Performance
Standards
for
Antimicrobial Susceptibility Testing; 36th informational
supplement[S]. Wayne, PA: Clinical and Laboratory
Standards Institute, 2026.
[48]
Zhang A, Wang X, Liang X, et al. Performance evaluation of
diagnostic assays for detection and classification of
carbapenemase‑producing
organisms[J].
Antibiotics
(Basel),
2021,
10(12):
1457.
DOI:
10.3390/
antibiotics10121457.
[49]
Takissian J, Bonnin RA, Naas T, et al. NG‑test carba 5 for
rapid
detection
of
carbapenemase‑producing
Enterobacterales
from
positive
blood
cultures[J].
Antimicrob Agents Chemother, 2019, 63(5): e00011‑19.
DOI: 10.1128/AAC.00011‑19.
[50]
Traczewski MM, Carretto E, Canton R, et al. Multicenter
evaluation of the Xpert Carba‑R assay for detection of
carbapenemase genes in Gram‑negative isolates[J]. J Clin
Microbiol, 2018, 56(8): e00272‑18. DOI: 10.1128/
JCM.00272‑18.
[51]
Zhang P, Wang Q, Zhou C, et al. A pooling strategy for
detecting carbapenem resistance genes by the Xpert
Carba‑R test in rectal swab specimens[J]. J Clin Microbiol,
2022, 60(12):e0118122. DOI: 10.1128/jcm.01181‑22.
[52]
Sherif M, Palmieri M, Mirande C, et al. Whole‑genome
sequencing of Egyptian multidrug‑resistant Klebsiella
pneumoniae isolates: a multi‑center pilot study[J]. Eur J
Clin Microbiol Infect Dis, 2021, 40(7): 1451‑1460. DOI:
10.1007/s10096‑021‑04177‑7.
[53]
Hakvoort H, Bovenkamp E, Greenwood‑Quaintance KE,
et al. Imipenem‑relebactam susceptibility testing of
gram‑negative bacilli by agar dilution, disk diffusion, and
gradient
strip
methods
compared
with
broth
microdilution[J].
J
Clin
Microbiol,
2020,
58(10):
e00695‑20. DOI: 10.1128/JCM.00695‑20.
[54]
中国医疗保健国际交流促进会临床微生物与感染分会,
中华医学会检验医学分会临床微生物学组, 中华医学会微
生物学与免疫学分会临床微生物学组. 多黏菌素类与替加
环素及头孢他啶/阿维巴坦药敏方法和报告专家共识[J].
中华检验医学杂志, 2020, 43(10):964‑972. DOI: 10.3760/
cma.j.cn114452‑20200719‑00619.
[55]
王辉, 俞云松, 王明贵, 等. 替加环素体外药敏试验操作规
程专家共识[J]. 中华检验医学杂志, 2013, 36(7):584‑587.
DOI: 10.3760/cma.j.issn.1009‑9158.2013.07.004.
[56]
国家卫生健康委临床抗微生物药物敏感性折点研究和标
准制定专家委员会, 中国医院协会临床微生物实验室专业
委员会, 欧洲临床微生物与感染病学会药敏委员会华人药
敏试验委员会. 依拉环素体外药物敏感性试验规范(2025)
[J]. 中华检验医学杂志, 2025, 48(6): 693‑700. DOI:
10.3760/cma.j.cn114452‑20250211‑00074.
[57]
Simner PJ, Palavecino EL, Satlin MJ, et al. Potential of
inaccurate cefiderocol susceptibility results: a CLSI AST
subcommittee advisory[J]. J Clin Microbiol, 2023, 61(4):
e0160022. DOI: 10.1128/jcm.01600‑22.
[58]
Horan TC, Andrus M, Dudeck MA. CDC/NHSN surveillance
definition of health care‑associated infection and criteria
for specific types of infections in the acute care setting[J].
Am J Infect Control, 2008, 36(5):309‑332. DOI: 10.1016/j.
ajic.2008.03.002.
[59]
Bréchot N, Hékimian G, Chastre J, et al. Procalcitonin to
guide antibiotic therapy in the ICU[J]. Int J Antimicrob
Agents, 2015, 46 Suppl 1: S19‑S24. DOI: 10.1016/j.
ijantimicag.2015.10.012.
[60]
Chuang CL, Yeh HT, Niu KY, et al. Diagnostic performances
of procalcitonin and C‑reactive protein for sepsis: a
systematic review and meta‑analysis[J]. Eur J Emerg Med,
2025, 32(4):248‑258. DOI: 10.1097/MEJ. 0000000000001235.
[61]
Ebell MH, Bentivegna M, Cai X, et al. Accuracy of
biomarkers
for
the
diagnosis
of
adult
community‑acquired pneumonia: a meta‑analysis[J]. Acad
Emerg Med, 2020, 27(3): 195‑206. DOI: 10.1111/
acem.13889.
[62]
万学红, 卢雪峰. 诊断学[M]. 10 版. 北京: 人民卫生出版社,
2024:551‑553.
[63]
Brumfield O, Mohamed A, He S, et al. The "5L" framework
of diagnostic reasoning: a stepwise scaffold to support
clinician educators[J]. J Hosp Med, 2026. DOI: 10.1002/
jhm.70312.
[64]
Watari T, Schiff GD. Diagnostic excellence in primary care
[J]. J Gen Fam Med, 2023, 24(3):143‑145. DOI: 10.1002/
jgf2.617.
[65]
Wagenlehner FM, Gasink LB, McGovern PC, et al.
Cefepime‑Taniborbactam in complicated urinary tract
infection[J]. N Engl J Med, 2024, 390(7): 611‑622. DOI:
10.1056/NEJMoa2304748.
[66]
Wang X, Zhao C, Wang Q, et al. In vitro activity of the novel
β‑lactamase inhibitor taniborbactam (VNRX‑5133), in
combination with cefepime or meropenem, against MDR
Gram‑negative
bacterial
isolates
from
China[J].
J
Antimicrob Chemother, 2020, 75(7): 1850‑1858. DOI:
10.1093/jac/dkaa053.
[67]
Wagenlehner
FM,
Sobel
JD,
Newell
P,
et al.
Ceftazidime‑avibactam
versus
doripenem
for
the
treatment of complicated urinary tract infections,
中华医学杂志 2026 年5 月26 日第 106 卷第 19 期 Natl Med J China, May 26, 2026, Vol. 106, No. 19
· 1897 ·
including acute pyelonephritis: RECAPTURE, a phase 3
randomized trial program[J]. Clin Infect Dis, 2016, 63(6):
754‑762. DOI: 10.1093/cid/ciw378.
[68]
Torres A, Zhong N, Pachl J, et al. Ceftazidime‑avibactam
versus meropenem in nosocomial pneumonia, including
ventilator‑associated
pneumonia
(REPROVE):
a
randomised, double‑blind, phase 3 non‑inferiority trial[J].
Lancet Infect Dis, 2018, 18(3): 285‑295. DOI: 10.1016/
S1473‑3099(17)30747‑8.
[69]
Motsch J, Murta de Oliveira C, Stus V, et al. RESTORE‑IMI
1:
a
multicenter,
randomized,
double‑blind
trial
comparing efficacy and safety of imipenem/relebactam
vs
colistin
plus
imipenem
in
patients
with
imipenem‑nonsusceptible bacterial infections[J]. Clin
Infect Dis, 2020, 70(9): 1799‑1808. DOI: 10.1093/
cid/ciz530.
[70]
Titov I, Wunderink RG, Roquilly A, et al. A randomized,
double‑blind, multicenter trial comparing efficacy and
safety
of
imipenem/cilastatin/relebactam
versus
piperacillin/tazobactam in adults with hospital‑acquired
or
ventilator‑associated
bacterial
pneumonia
(RESTORE‑IMI 2 study) [J]. Clin Infect Dis, 2021, 73(11):
e4539‑e4548. DOI: 10.1093/cid/ciaa803.
[71]
Jin D, Hu D, Jin Y. Real‑world effectiveness and safety of
meropenem‑vaborbactam
in
the
treatment
of
carbapenem‑resistant enterobacterales (CRE) infections:
a systematic review and meta‑analysis[J]. J Chemother,
2025, 37(8): 653‑661. DOI: 10.1080/1120009X. 2025.
2465129.
[72]
Tamma PD, Heil EL, Justo JA, et al. Infectious Diseases
Society of America 2024 guidance on the treatment of
antimicrobial‑resistant Gram‑negative infections[J]. Clin
Infect Dis, 2024:ciae403 [pii]. DOI: 10.1093/cid/ciae403.
[73]
Almyroudi MP, Chang A, Andrianopoulos I, et al. Novel
antibiotics for Gram‑negative nosocomial pneumonia[J].
Antibiotics (Basel), 2024, 13(7): 629. DOI: 10.3390/
antibiotics13070629.
[74]
Galani I, Karaiskos I, Angelidis E, et al. Emergence of
ceftazidime‑avibactam
resistance
through
distinct
genomic adaptations in KPC‑2‑producing Klebsiella
pneumoniae of sequence type 39 during treatment[J]. Eur
J Clin Microbiol Infect Dis, 2021, 40(1): 219‑224. DOI:
10.1007/s10096‑020‑04000‑9.
[75]
Hsu W, Chuang MH, Tsai WW, et al. Ceftazidime‑avibactam
combination therapy versus monotherapy for treating
carbapenem‑resistant gram‑negative infection: a systemic
review and meta‑analysis[J]. Infection, 2024, 52(5):
2029‑2042. DOI: 10.1007/s15010‑024‑02277‑y.
[76]
国家卫生健康委员会. 抗菌药物临床应用指导原则
(2015年版)[S]. 国卫办医发[2015]43号, 2015.
[77]
Zeng M, Xia J, Zong Z, et al. Guidelines for the diagnosis,
treatment, prevention and control of infections caused by
carbapenem‑resistant gram‑negative bacilli[J]. J Microbiol
Immunol Infect, 2023, 56(4): 653‑671. DOI: 10.1016/j.
jmii.2023.01.017.
[78]
Kaye KS, Marchaim D, Thamlikitkul V, et al. Colistin
monotherapy
versus
combination
therapy
for
carbapenem‑resistant organisms[J]. NEJM Evid, 2023,
2(1):
10.1056/evidoa2200131.
DOI:
10.1056/
evidoa2200131.
[79]
Bulut
R,
Erayman
İ,
Kandemir
B,
et al.
Ceftazidime‑avibactam in multidrug‑resistant Klebsiella
spp.
Infections:
is
monotherapy
as
effective
as
combination therapy?[J]. Antibiotics (Basel), 2026, 15(2):
116. DOI: 10.3390/antibiotics15020116.
[80]
Tumbarello M, Raffaelli F, Giannella M, et al. Outcomes
and predictors of mortality in patients with KPC‑Kp
infections treated with meropenem vaborbactam: an
observational multicenter study[J]. Open Forum Infect
Dis, 2024, 11(6):ofae273. DOI: 10.1093/ofid/ofae273.
[81]
Savoldi A, Carrara E, Piddock LJV, et al. The role of
combination therapy in the treatment of severe infections
caused by carbapenem resistant gram‑negatives: a
systematic review of clinical studies[J]. BMC Infect Dis,
2021, 21(1):545. DOI: 10.1186/s12879‑021‑06253‑x.
[82]
Lai C, Ma Z, Zhang J, et al. Efficiency of combination
therapy versus monotherapy for the treatment of
infections due to carbapenem‑resistant Gram‑negative
bacteria: a systematic review and meta‑analysis[J]. Syst
Rev, 2024, 13(1):309. DOI: 10.1186/s13643‑024‑02695‑x.
[83]
Paul M, Carrara E, Retamar P, et al. European Society of
Clinical
Microbiology
and
Infectious
Diseases
(ESCMID) guidelines for the treatment of infections
caused by multidrug‑resistant Gram‑negative bacilli
(endorsed by European society of intensive care
medicine)[J]. Clin Microbiol Infect, 2022, 28(4):521‑547.
DOI: 10.1016/j.cmi.2021.11.025.
[84]
Meini S, Viaggi B, Tascini C. Mono vs. combo regimens
with
novel
beta‑lactam/beta‑lactamase
inhibitor
combinations for the treatment of infections due to
carbapenemase‑producing
Enterobacterales:
insights
from the literature[J]. Infection, 2021, 49(3): 411‑421.
DOI: 10.1007/s15010‑021‑01577‑x.
[85]
Macesic N, Uhlemann AC, Peleg AY. Multidrug‑resistant
Gram‑negative bacterial infections[J]. Lancet, 2025,
405(10474): 257‑272. DOI: 10.1016/S0140‑6736(24)
02081‑6.
[86]
Sophonsri A, Kalu M, Wong‑Beringer A. Comparative in
vitro
activity
of
ceftazidime‑avibactam,
imipenem‑relebactam,
and
meropenem‑vaborbactam
against
carbapenem‑resistant
clinical
isolates
of
Klebsiella pneumoniae and Pseudomonas aeruginosa[J].
Antibiotics (Basel), 2024, 13(5): 416. DOI: 10.3390/
antibiotics13050416.
[87]
Chen Y, Huang HB, Peng JM, et al. Efficacy and safety of
ceftazidime‑avibactam
for
the
treatment
of
carbapenem‑resistant
Enterobacterales
bloodstream
infection: a systematic review and Meta‑analysis[J].
Microbiol Spectr, 2022, 10(2): e0260321. DOI: 10.1128/
spectrum.02603‑21.
[88]
Herrera F, Torres D, Leone M, et al. Ceftazidime‑avibactam
regimens
for
the
treatment
of
bacteremic
and
non‑bacteremic episodes of carbapenemase‑producing
Enterobacterales
infections
in
immunosuppressed
patients[J]. Pathogens, 2025, 14(12):1300. DOI: 10.3390/
pathogens14121300.
[89]
Bassetti
M,
Giacobbe
DR,
Vena
A,
et al.
Meropenem‑vaborbactam
for
treatment
of
carbapenem‑resistant
Enterobacterales:
a
narrative
review of clinical practice evidence[J]. Infect Dis Ther,
2025,
14(5):
973‑989.
DOI:
10.1007/s40121‑025‑
01146‑x.
· 1898 ·
中华医学杂志 2026 年5 月26 日第 106 卷第 19 期 Natl Med J China, May 26, 2026, Vol. 106, No. 19
[90]
丁丽, 陈佰义, 李敏, 等. 碳青霉烯类耐药革兰阴性菌联合
药敏试验及报告专家共识[J]. 中国感染与化疗杂志, 2023,
23(1):80‑90. DOI: 10.16718/j.1009‑7708.2023.01.013.
[91]
Hayashi K, Suzuki M, Ishii Y, et al. In vitro activity of
aztreonam in combination with relebactam against
gram‑negative pathogens producing various serine and
metallo‑β‑lactamases[J]. J Glob Antimicrob Resist, 2025,
42:73‑79. DOI: 10.1016/j.jgar.2025.02.008.
[92]
Pipitò
L,
Rubino
R,
Immordino
R,
et al.
Imipenem/relebactam plus aztreonam: first reported use
in
MDR
Klebsiella
pneumoniae
sternal
infection
complicated by bacteremia[J]. Antibiotics (Basel), 2025,
14(10):1007. DOI: 10.3390/antibiotics14101007.
[93]
Zavascki AP, Chebabo A, Cunha CA, et al. Guideline for
antimicrobial
treatment
of
multidrug‑resistant
Gram‑negative infections: practice recommendations of
the Brazilian Society of Infectious Diseases[J]. Braz J
Infect Dis, 2025, 29(6): 104589. DOI: 10.1016/j.
bjid.2025.104589.
[94]
中国噬菌体研究联盟, 中国生物工程学会噬菌体技术专业
委员会, 中国微生物学会医学微生物学与免疫学专业委员
会. 噬菌体治疗中国专家建议[J]. 中华传染病杂志, 2023,
41(10):
631‑639.
DOI:
10.3760/cma.
j.
cn311365‑
20230418‑00120.
[95]
中华医学会肝病学分会肝病相关消化学组. 肠道菌群移植
治疗慢性肝病的临床应用专家共识(2025 版)[J]. 中华肝脏
病杂志, 2025, 33(8): 738‑746. DOI: 10.3760/cma. j.
cn501113‑20250429‑00163.
[96]
Oliveira Júnior NG, Souza CM, Buccini DF, et al.
Antimicrobial
peptides:
structure,
functions
and
translational applications[J]. Nat Rev Microbiol, 2025,
23(11):687‑700. DOI: 10.1038/s41579‑025‑01200‑y.
[97]
Jaiswal SR, Bhakuni P, Bhagwati G, et al. Impact of
preemptive
granulocyte
infusions
during
febrile
neutropenia
in
patients
colonized
with
carbapenem‑resistant gram‑negative bacteria undergoing
haploidentical transplantation[J]. Biol Blood Marrow
Transplant, 2019, 25(8): 1621‑1628. DOI: 10.1016/j.
bbmt.2019.04.023.
[98]
Centers for Disease Control and Prevention (CDC).
Guidance
for
control
of
infections
with
carbapenem‑resistant
or
carbapenemase‑producing
Enterobacteriaceae in acute care facilities[J]. MMWR
Morb Mortal Wkly Rep, 2009, 58(10):256‑260.
[99]
中华医学会血液学分会, 中国医师协会血液科医师分会.
血液肿瘤患者碳青霉烯类耐药的肠杆菌科细菌(CRE)感染
的诊治与防控中国专家共识(2020 年版)[J]. 中华血液学
杂志, 2020, 41(11): 881‑889. DOI: 10.3760/cma. j.
issn.0253‑2727.2020.11.001.
[100]
喻华, 徐雪松, 李敏, 等. 肠杆菌目细菌碳青霉烯酶的实验
室检测和临床报告规范专家共识(第二版)[J]. 中国感染与
化疗杂志, 2022, 22(4): 463‑474. DOI: 10.16718/j.
1009‑7708.2022.04.014.
[101]
Gu W, Deng X, Lee M, et al. Rapid pathogen detection by
metagenomic next‑generation sequencing of infected
body fluids[J]. Nat Med, 2021, 27(1): 115‑124. DOI:
10.1038/s41591‑020‑1105‑z.
[102]
Schürch AC, Arredondo‑Alonso S, Willems R, et al. Whole
genome sequencing options for bacterial strain typing
and epidemiologic analysis based on single nucleotide
polymorphism versus gene‑by‑gene‑based approaches[J].
Clin Microbiol Infect, 2018, 24(4):350‑354. DOI: 10.1016/
j.cmi.2017.12.016.
[103]
Duval A, Opatowski L, Brisse S. Defining genomic
epidemiology thresholds for common‑source bacterial
outbreaks: a modelling study[J]. Lancet Microbe, 2023,
4(5):e349‑e357. DOI: 10.1016/S2666‑5247(22)00380‑9.
[104]
Wang M, Jin L, Wang R, et al. KpnK48 clone driving
hypervirulent
carbapenem‑resistant
Escherichia
coli
epidemics: insights into its evolutionary trajectory
similar to Klebsiella pneumoniae[J]. Drug Resist Updat,
2025, 81:101243. DOI: 10.1016/j.drup.2025.101243.
[105]
Wang S, Sun S, Wang Q, et al. PathoTracker: an online
analytical
metagenomic
platform
for
Klebsiella
pneumoniae feature identification and outbreak alerting
[J]. Commun Biol, 2024, 7(1): 1038. DOI: 10.1038/
s42003‑024‑06720‑6.
[106]
World Health Organization. Guidelines for the Prevention
and
Control
of
Carbapenem‑Resistant
Enterobacteriaceae,
Acinetobacter
baumannii
and
Pseudomonas aeruginosa in Health Care Facilities[M].
Geneva: World Health Organization, 2017.
[107]
Magiorakos AP, Burns K, Rodríguez Baño J, et al. Infection
prevention and control measures and tools for the
prevention
of
entry
of
carbapenem‑resistant
Enterobacteriaceae into healthcare settings: guidance
from the European Centre for Disease Prevention and
Control[J]. Antimicrob Resist Infect Control, 2017, 6:113.
DOI: 10.1186/s13756‑017‑0259‑z.
[108]
Ambretti S, Bassetti M, Clerici P, et al. Screening for
carriage of carbapenem‑resistant Enterobacteriaceae in
settings of high endemicity: a position paper from an
Italian working group on CRE infections[J]. Antimicrob
Resist Infect Control, 2019, 8: 136. DOI: 10.1186/
s13756‑019‑0591‑6.
[109]
碳青霉烯类耐药肠杆菌预防与控制标准WS/T
826‑2023[J]. 中国感染控制杂志, 2023, 22(10):
1274‑1278. DOI: 10.12138/j.issn.1671‑9638.20233817.
[110]
Lee BY, Bartsch SM, Hayden MK, et al. How introducing a
registry with automated alerts for carbapenem‑resistant
Enterobacteriaceae (CRE) may help control CRE spread in
a region[J]. Clin Infect Dis, 2020, 70(5): 843‑849. DOI:
10.1093/cid/ciz300.
[111]
Ellingson KD, Noble BN, Buser GL, et al. Interfacility
transfer communication of multidrug‑resistant organism
colonization or infection status: practices and barriers in
the acute‑care setting[J]. Infect Control Hosp Epidemiol,
2022, 43(4):448‑453. DOI: 10.1017/ice.2021.131.
[112]
Ben‑David D, Masarwa S, Fallach N, et al. National policy
for
carbapenem‑resistant
Enterobacteriaceae
(CRE)
clearance and discontinuation of contact precautions for
CRE carriers in post‑acute care hospitals in Israel: impact
on isolation‑days and new acquisitions[J]. Clin Infect Dis,
2021, 72(5):829‑835. DOI: 10.1093/cid/ciaa123.
[113]
van Duijn PJ, Verbrugghe W, Jorens PG, et al. The effects of
antibiotic cycling and mixing on antibiotic resistance in
intensive care units: a cluster‑randomised crossover trial
[J]. Lancet Infect Dis, 2018, 18(4):401‑409. DOI: 10.1016/
S1473‑3099(18)30056‑2.
[114]
赵艳春, 胡必杰, 吴安华, 等. 全国多中心ICU抗菌药物使用
与多药耐药菌监测分析[J]. 中华医院感染学杂志, 2015,
25(21):4867‑4869. DOI: 10.11816/cn.ni.2015‑151878.